Информация - Ветеринарная терапия

Она разрывает стенки бронхов и альвеол и выте­кает из трахеи, где собирается, а затем кон­центрируется при процеживании через сито (диаметр отверстия 38 pm). Лучше материал исследовать сразу же.

Извлечение и подсчет меньших по размеру легочных гельминтов мелких жвачных животных проводить сложнее, хотя может применяться методика Индербитцена.

Извлечение трематод и цестод

При исследовании на наличие фасциол и дикроцелий печень удаляется и разрезается на доль­ки толщиной в 1 см, при сжатии этих долек гель­минты выдавливаются, их собирают и консерви­руют. Дольки печени погружают в теплую воду, где оставляют на ночь. Желчный пузырь также вскрывают и промывают, а гельминтов выбирают.

После того как дольки печени пролежали в воде, их снова сдавливают, промывают в чис­той воде и выбрасывают. Воду от промывания процеживают через сито (диаметр отверстий 100 цт), а остаток консервируют в формалине. При кишечных парамфистомах первые 4 м двенад­цатиперстной кишки следует перевязать, затем вскрыть, промыть и исследовать на наличие тре­матод.

Подсчет проводится под микроскопом. Учи­тывается число целых трематод, а также коли­чество головных и хвостовых концов. Наиболь­шее число головных или хвостовых концов скла­дывается с числом целых нематод.

Цестоды обычно хорошо заметны в кишеч­нике или печени, но по возможности их следу­ет извлекать аккуратно, так, чтобы головные концы и зрелые сегменты, а также сегменты с яйцами были доступны для специального иссле­дования. Однако в случае Echinococcus у собачь­их гельминты такие небольшие, что их иссле­дование следует провести более детально, как описано в ниже.

Другие методы диагностики

Имеется две другие методики для диагно­стики трихострогилид жвачных животных. Пер­вая — исследование пепсиногена плазмы, а вторая — подсчет инвазионных личинок на па­стбище.

Оба этих метода обычно не используются в ежедневной практической деятельности, но здесь приводится короткий обзор необходимых мате­риалов для проведения этих тестов, основные этапы их проведения и принципы интерпрета­ции результатов.

Исследование пепсиногена плазмы

Подсчет циркулирующего пепсиногена приме­няется при диагностике паразитарных заболева­ний сычуга, а особенно остертагиоза. Также этот метод проводят при других паразитах желудка, например, Trichostrongylus axei, Haemonchus contortus и у свиней — Hyostrongylus rubidus.

Образец сыворотки или плазмы подкисляет­ся до рН 2,0, таким образом, активизируется неактивный зимоген, пепсиноген для активации протеолитического фермента пепсина. Этот ак­тивированный пепсин затем реагирует с белко­вым субстратом (обычно сывороточным альбу­мином крупного рогатого скота), а концентра­ция фермента подсчитывается в международных единицах (рмоль тирозина, высвобождаемого на 100 мл сыворотки в минуту). Тирозин освобожда­ется из белкового субстата пепсином и обнару­живается по синему цвету, который образуется при реакции фенольных соединений с реагентом Фолин—Чокалт. Для проведения теста необхо­димо 1,5 мл сыворотки или плазмы. В качестве коагулянта используется ЭДТА или гепарин.

При гастритах жвачных животных при пара-зитировании Ostertagia spp. и Т. axei уровень пеп­синогена плазмы повышается. У животных, у которых инвазия паразитами отсутствует, уро­вень тирозина менее 1,0 ME; у умеренно инвазированных животных этот показатель состав­ляет 1,0—2,0. При сильной инвазии он превышает 3,0 и достигает 10,0 или более. Интерпретация результатов проста, если возраст животных не более 18 месяцев, но впоследствии затрудняет­ся, так как может повышаться. В таких случаях отсутствие классической клинической картины диареи и потерь веса указывает на то, что инва­зия небольшая.

Подсчет личинок на пастбище

Для проведения данного метода собираются образцы травы с пастбища и помещаются в по­лиэтиленовый пакет, который затем отправля­ется в лабораторию. Важно собирать траву с раз­личных участков пастбища. Можно, пересекая его, отбирать по 4 образца травы через каждые 4 шага до тех пор, пока не будет собрано 400. Также можно собирать примерно такое же чис­ло образцов около фекальных лепешек, что прежде всего необходимо диагностики личинок диктиокаулюсов. В лаборатории трава тщатель­но вымачивается, промывается и высушивает­ся. Жидкость, содержащая личинок, пропуска­ется через сито (диаметр отверстия 38 рт; 600 на 2,54 см2) с целью удаления примесей. Затем материал подготавливается к исследованию по методике Бермана, личинки исследуются и подсчитываются под микроскопом под большим уве­личением. Результат подсчета выражается, как число личинок 3-й стадии на 1 кг сухой травы.

Если число личинок трихостронгилид желу­дочно-кишечного тракта жвачных животных превышает 1000 личинок 3-й стадии на 1 кг тра­вы, пастбище считается умеренно инфектив-ным, а более 5000 личинок — может вызвать клинически протекающее заболевание у моло­дого крупного рогатого скота во время первого пастбищного сезона.

Однако для определения легочных гельмин­тов эта методика менее приемлема из-за быст­рой изменчивости этих личинок на пастбище. Для этого используется метод Йоргенсона, который основывается на миграции паразитов через агар, содержащий желчь. Так как личинки большин­ства легочных гельминтов располагаются около фекалий, образцы травы следует собирать вок­руг них. Но следует помнить, что даже негатив­ный результат не всегда означает, что пастби­ще не контаминировано.

Эктопаразиты

Членистоногие, имеющие ветеринарное зна­чение, разделяются на 2 основные группы: Insecta и Arachnida. Большинство из них временные или постоянные эктопаразиты, существуют они как на коже, так и внутри ее, за исключением неко­торых мух, личиночные стадии которых могут быть обнаружены в соматических тканях хозяи­на. Паразитические насекомые включают мух, вшей, блох, в то время как группа арахнид, имеющих ветеринарное значение, включает паразитиформных и акариформных клещей. Во всех случаях диагноз основывается на сборе и идентификации паразитов.

Насекомые

Взрослых двукрылых мух обычно ловят сет­кой (сачком) или собирают после дезинсекции. Личинки собираются в помещениях, где содер­жатся животные, или берутся прямо от живот­ных, у которых паразитируют личиночные ста­дии. Идентификация мух до родов достаточно проста. Основные особенности описаны в тексте. Однако идентификация родовой и видовой при­надлежности личинок более сложная и основы­вается на исследовании особенностей дыхалец. В конце главы приводится литература по данному вопросу.

Вши и блохи

Обнаружение мелких эктопаразитов, таких, как вши и блохи, основывается на тщательном исследовании кожных покровов. Яйца вшей мо­гут быть прикреплены к волосам или перьям. Блох обнаружить сложнее, но можно найти их фека­лии в шерсти, имеющие вид темных песчинок, которые при контакте с влажной шерстью или тканью приобретают красный цвет из-за нали­чия переваренной крови. Это подтверждает на­личие блох. При заражении большим количеством блох их можно вычесывать. Вшей можно уда­лять также расчесыванием или вакуумной чист­кой. У мелких животных паразитов можно лег­ко обнаружить, если животного поместить на лист бумаги, клеенки (пластика) и обработать ин­сектицидами. Основные особенности вшей и блох были описаны в тексте.

Паразитиформные клещи

Обнаруживаются легко на хозяине, особен­но, когда они напитались кровью. При их уда­лении следует соблюдать осторожность, так как ротовой аппарат обычно глубоко располагает­ся в коже. Бели кусочек ваты погрузить в анестезирующее вещество и положить на клеща, он легко выходит из ткани. Этого же можно добиться, если рядом подержать горячий пред­мет.

Один из самых простых методов сбора кле­щей с пастбища — положить одеяло на землю, к которому прикрепляются голодные клещи. Спе­цифическая идентификация клещей описана в тексте (табл. 5).

акариформные клещи

Otodectes может обнаруживаться при иссле­довании наружного слухового прохода с помо­щью ауроскопа или при микроскопическом исследовани ушной серы. Тщательным вычесыва­нием и последующим микроскопическим иссле­дованием материала (шерсти) выявляются Cheyletiella. Для обнаружения накожных и ко-жеедных клещей часто необходимо получить соскоб кожи, который затем исследуется под микроскопом. Область, выбираемая для соскоба, должна располагаться на краю участка по­ражения. Волосы вокруг него выстригаются. На предметное стекло помещается капля жидкого парафина, а перед взятием соскоба кончик скаль­пеля также помещается в парафин. Соскабли­вание проводится до тех пор, пока не появля­ется небольшое количество крови на поверхно­сти кожи, и материал переносится на предмет­ное стекло. Затем накладывается покровное стек­ло и образец исследуется под малым увеличе­нием (х 100). Если во время начального исследо­вания клещи не обнаруживаются, в образец на предметное стекло капают 10% каустическую соду. Через 5—10 минут препарат исследуют снова.

Хранение

Большинство взрослых членистоногих и их развивающиеся стадии можно сохранять в 70% спирте в небольшом стаканчике или пластико­вом сосуде.

Протозоозы

Лабораторная диагностика проводится доста­точно легко. Она удобна для практикующего вра­ча. В некоторых случаях, однако, может потре­боваться применение специальных методов и большой опыт. Ниже приводятся более простые методы.

Исследование фекалий

Метод флотации МакМастера является наи­более простым для определения наличия и под­счета ооцист кокцидий в фекалиях. Он подробно описан в разделе диагностики гельминтозов и пол­ностью применим для диагностики протозоозов, хотя мелкий размер ооцист удлиняет микроско­пическое исследование. Если у животного имеют­ся острые клинические признаки кокцидиоза, например, присутствие крови в фекалиях и ог­ромного (тысячи) количества ооцист, можно счи­тать диагноз подтвержденным. к сожалению, при заражении многими другими видами кокцидий клинические признаки могут проявляться в фазу шизогонии или когда продуцирование ооцист толь­ко началось и их еще нет в фекалиях. Поэтому негативный результат не всегда указывает на то, что клинический диагноз неправильный. При ме­нее остро протекающем кокцидиозе, связанном со снижением продукции, подсчет ооцист также не имеет большого значения.

Всегда желательно проведение патологоана-томического исследования.

Для определения паразитирующих в кише-нике простейших, например, Entamoeba, Giardia или Balantidium, небольшое количество свежих фекалий смешивается с теплым физиологичес­ким раствором и исследуется под микроскопом с подогревом для обнаружения трофозоитов или цист. Однако их идентификация требует боль­шого опыта, поэтому образцы лучше законсер­вировать и отправить в специализированную ла­бораторию.

Диагностика криптоспоридиоза основывается на исследовании фекальных мазков, окрашен­ных по Циль—Нельсену. Мелкие тонкостенные ооцисты при этом становятся красными.

Исследование крови и лимфы

Для обнаружения трипаносом, бабезий и тей-лерий, а также анаплазм, риккетсии и диагнос­тики эперитрозооноза применяется микроскопия окрашенных мазков крови. Иногда проводится биопсия увеличенных лимфатических узлов для обнаружения трипаносом (особенно Trypanosoma brucei или Т. vivax) или шизонтов тейлерий в окрашенных мазках.

При трипаносомозе паразитемия может быть незначительной, и вероятность положительного диагноза увеличивается при исследовании тол­стого мазка, дегемоглобинизированного путем его погружения в воду перед окрашиванием эози-ном. Для этого капля свежей крови без антикоа­гулянта капается на предметное стекло. Диаметр мазка при этом составляет около 10 мм. Мазок высушивается, а затем применяется методика Филда для окрашивания.

Эта методика часто используется в полевых условиях.

Микроскопию трипаносом эффективно про­водить в темном поле зрения микроскопа для обнаружения подвижных трипаносом.

В полевых условиях практикуется инокуля­ция мышей свежей кровью от животных, подо­зреваемых в заражении Trypanosoma congolense или Т. brucei. Через три дня исследуется кровь, которая берется из хвоста мышки, а затем каж­дый день в течение 3—4 недель.

Также при диагностике тейлериоза, три­паносомоза, включая Т. cruzi, бабезиоза, крип-тоспоридиоза и риккетсиозов может приме­няться метод определения специфических ан­тител. Однако позитивный результат не все­гда указывает на то, что животное больно, но возможно, что оно контактировало с пато­геном ранее. Однако в случае токсоплазмоза овец подъем уровня антител через несколько недель указывает на недавнее инвазирование и активное заболевание.

Исследование кожи

Для обнаружения амастиготных паразитов в макрофагах может применяться гистологическое

исследование проб кожи, полученных методом биопсии или соскобов с краев кожных язв.

При диагностике Trypanosoma equiperdum исследуется жидкость, выделяющаяся из кож­ных бляшек.

Также можно использовать ксенодиагностику. Этот метод применяется для диагностики ба­безиоза, тейлериоза или Trypanosoma cruzi, ког­да паразита бывает сложно обнаружить в крови. При этом методе промежуточный хозяин, напри­мер, клещ, кормится на подозреваемом живот­ном в лабораторных условиях. После питания в течение нескольких недель в нем размножаются заглоченные паразитические организмы, после чего клещ убивается и исследуется на наличие инвазии.

Доставка нужных лекарств из интернет аптеки. Лекарства аптека.